一、實驗目的

1. 建立Kibron儀器檢測益生菌發酵液動態表麵張力、計算AUC張力麵積的標準化可複現操作流程,整合界麵吸附速率、吸附總量、平衡張力多維度信息,彌補單一平衡張力參數的局限性。

2. 精準獲取不同益生菌菌株、不同發酵周期發酵上清的AUC張力麵積參數,量化菌株代謝界麵活性物質的綜合能力。

3. 同步開展益生菌體外益生潛力檢測,構建AUC張力麵積與菌株黏附、抑菌、乳化等益生功能的關聯體係。

4. 建立理化界麵參數結合功能指標的益生菌篩選、發酵工藝優化評價體係。


二、儀器材料與試劑準備

1. 儀器

芬蘭Kibron91视频下载安装,可選EZ‑Pi Plus單通道、Delta‑8高通量機型,配套DyneProbe鉑銥探針、溫控樣品台及專用分析軟件。配備高速冷凍離心機、真空脫氣裝置、精密pH計、超純水機、恒溫搖床,數據處理設備用於梯形法AUC積分計算。單通道適配3640型號PTFE樣品杯,高通量適配DynePlate 96孔微孔板。


2. 試劑與樣品

待測益生菌菌株,包含乳杆菌、雙歧杆菌等常用功能菌株,配套專用液體發酵培養基。設置未接種、同步孵育的空白培養基對照組。配備益生菌體外益生潛力檢測所需試劑,病原菌菌株、細胞培養體係、乳化測試用油相等。所有培養基提前真空脫氣10至15分鍾,去除溶解氣泡幹擾。


3. 耗材

無菌低吸附離心管、無水乙醇、0.22μm低吸附水係濾膜、無菌低吸附移液槍頭。濾膜需提前用對應發酵培養基潤洗,避免吸附益生菌胞外多糖、脂肽等活性物質,減少實驗誤差。


4. 儀器校驗準備

將儀器放置在無震動、無空調直吹的平穩台麵,整機通電預熱60分鍾,全程關閉防風罩。鉑銥探針依次用超純水衝洗、無水乙醇衝洗、高純氮氣吹幹,檢查探針尖端無彎折、無殘留汙漬。在25℃恒溫條件下完成純水張力校準,純水表麵張力穩定在72.0至72.8mN/m,儀器通道偏差小於0.2mN/m,基線無漂移即為校驗合格。統一設定實驗測試溫度為25.0±0.5℃。


三、益生菌發酵液樣品製備

1. 菌株培養取樣

將保存的益生菌菌株常規活化處理,轉接至液體發酵培養基,設置標準搖床發酵條件,每組菌株設置3組生物學平行樣本。同時設置未接種的空白培養基,與實驗組在相同條件下同步孵育。按照實驗梯度,分別在0h、12h、24h、36h、48h進行定點取樣。


2. 樣品預處理

采集的菌液置於高速冷凍離心機,8000g離心20分鍾,徹底去除菌體細胞與沉澱雜質,緩慢吸取上層澄清上清液。使用提前潤洗好的0.22μm低吸附濾膜對上清液過濾,去除微小殘留顆粒。全程操作輕柔,禁止劇烈渦旋震蕩,防止產生氣泡或破壞活性物質結構。


3. 樣品分組與保存

實驗樣品分為各組益生菌發酵上清液、同批次空白培養基對照組。單通道測試樣品體積控製在150至200μL,高通量96孔板每孔加樣50μL。樣品遵循現提現測原則,益生菌代謝活性物質穩定性較弱,若需短期存放,4℃避光保存不超過12小時,上機前恢複至室溫。


4. 樣品平衡處理

過濾完成的待測樣品與空白樣品,室溫靜置平衡30分鍾,使液麵狀態、溶液組分完全穩定。目視檢查樣品無沉澱、無氣泡,存在氣泡的樣品需重新製備。


四、Kibron上機完整操作流程

1. 軟件參數設置

新建動態表麵張力時間掃描測試方案,恒定測試溫度25℃。根據益生菌界麵吸附特性,設置總采集時長90至120分鍾,完整覆蓋吸附全過程,保證曲線達到平衡平台,滿足AUC積分計算要求。數據采集間隔2至5秒每點,探針下降速度2mm/min,探針液麵浸入深度固定0.3mm,每個樣品設置2次技術重複。


2. 上樣操作

單通道測試取150至200μL發酵上清液,沿PTFE樣品杯杯壁緩慢加樣,避免衝擊液麵產生氣泡。將樣品杯固定在溫控樣品台,關閉防風罩靜置8至10分鍾,消除移液擾動。待液麵完全穩定後,控製探針下降接觸氣液界麵,啟動數據采集,全程記錄動態張力變化曲線。


高通量96孔板測試,每孔緩慢加入50μL樣品,避免觸碰孔壁與液麵。加樣完成後逐孔檢查,剔除含氣泡微孔,將微孔板固定卡槽,將待測樣品與空白樣品均勻排布在同一板內,統一環境條件,啟動批量自動測試。


3. 探針清洗流程

單個樣品測試完成後,探針依次用超純水衝洗3次、無水乙醇衝洗、高純氮氣吹幹。益生菌發酵液中的蛋白、脂肽、多糖極易吸附在探針表麵,必須徹底清洗,避免交叉汙染。全部樣品測試結束後,用無水乙醇短暫浸泡探針,再次衝洗吹幹後保存。


4. 測試順序

嚴格按照基線校準、空白測試、樣品測試的順序操作。先檢測超純水基線,確認儀器狀態正常,再測試同批次空白培養基,最後檢測各組益生菌發酵上清樣品。所有測試完成後複測超純水,若純水張力偏差大於0.2mN/m,說明探針存在殘留汙染,本組數據作廢,深度清洗探針後重新實驗。


五、數據處理、AUC張力麵積計算與益生潛力關聯分析

1. 整理儀器導出的原始動態張力數據,對比實驗前後超純水基線數值,基線漂移超0.2mN/m的樣本數據全部剔除。


2. 以同批次空白培養基張力曲線為基準,扣除基質本底幹擾,得到校正後益生菌發酵液動態表麵張力-時間變化曲線,保證數據僅反映菌株代謝活性物質的界麵作用。


3. 采用梯形積分法對完整時間段的校正曲線進行積分計算,得到AUC張力麵積,單位為mN·m⁻¹·min。AUC數值越小,代表菌株代謝產物界麵活性越強,界麵吸附效率越高、張力下降效果越顯著。同步提取初始表麵張力、平衡表麵張力、張力下降速率參數,計算所有平行樣本的平均值與標準偏差。


4. 采用同一批次發酵樣品開展體外益生潛力檢測,可檢測指標包含細胞黏附率、病原菌抑菌活性、溶液乳化指數、菌體自聚集與共聚集能力等,量化各組菌株的益生功能水平。


5. 將各組菌株的AUC張力麵積與益生潛力指標一一匹配,繪製相關性散點圖,開展統計學相關性分析。結合菌株代謝特性,區分界麵活性物質與有機酸等組分對益生功能的貢獻,明確AUC張力麵積評價益生菌益生潛力的適配規律。


六、關鍵細節與質量控製

1. AUC張力麵積為全周期積分參數,必須保證測試時長完整、曲線達到平衡狀態,禁止截取局部時間段計算積分,無法真實反映菌株整體界麵活性。不可用單一平衡張力數值替代AUC參數。


2. 界麵張力測試與益生功能檢測必須使用同一批次樣品,縮短兩項實驗的時間間隔,避免活性物質降解導致理化數據與功能數據不匹配。


3. 濾膜必須提前用發酵培養基潤洗,有效降低濾膜對益生菌活性代謝產物的吸附損耗,保證測試數據真實準確。


4. 全程嚴控氣泡產生,微量體係氣泡隱蔽性強,若曲線出現無規則高頻抖動,判定為氣泡幹擾,需重新製備樣品測試。


5. 實驗環境溫度波動控製在±1℃以內,實驗台麵保持絕對平穩,避免震動幹擾液麵狀態,降低曲線噪音,保障AUC積分計算精度。


6. 嚴格控製測試時長不超過120分鍾,實驗環境濕度維持40%至60%,減少溶劑揮發造成的樣品濃度漂移,避免數據失真。